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Diagnóstico de parasitosis intestinales - Coggle Diagram
Diagnóstico de parasitosis intestinales
Métodos Cuantitatvos
Stoll
Consiste en:
Este método cuantifica la carga de helmintos en heces mediante la dilución de una cantidad fija de muestra en solución salina y el conteo de huevos en un volumen determinado.
Procedimiento
Se mezclan 3 g de heces con 42 mL de solución salina fisiológica.
Se homogeniza bien la mezcla.
Se toma una alícuota de 0.15 mL y se coloca en un portaobjetos con cuadrícula.
Se cuenta el número de huevos bajo el microscopio.
Se extrapola el resultado a huevos por gramo (HPG) de heces.
Cálculo:
HPG= Número de huevos contados x 280
(Dado que 0.15 mL representa 1/280 de la muestra total).
Ventajas
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Desventajas
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Kato
Consiste en:
Utiliza una cantidad estandarizada de heces que se coloca bajo una lámina de celofán impregnada con verde de malaquita. La coloración transparente permite visualizar los huevos de helmintos bajo el microscopio.
Procedimiento
Se coloca una muestra de heces en la plantilla de cartón (generalmente 41.7 mg).
Se extiende sobre el portaobjetos y se cubre con una lámina de celofán previamente humedecida con solución de verde de malaquita.
Se deja reposar 30-60 minutos para aclarar la muestra.
Se observa al microscopio y se cuentan los huevos de helmintos presentes.
Se extrapola el conteo a HPG.
Ventajas
Método estandarizado recomendado por la OMS.
Útil para cuantificar infecciones por Ascaris, Trichuris y uncinarias.
Desventajas
No es efectivo para huevos de tremátodos ni protozoarios.
La muestra debe analizarse dentro de 30-60 minutos antes de que los huevos se deshidraten.
Métodos Cualitativos
Faust
Consiste en:
Este método se basa en la flotación diferencial de los parásitos en una solución de sulfato de zinc de densidad específica (~1.18). Los quistes, algunos huevos y larvas de parásitos flotan, mientras que los detritos fecales más pesados se hunden.
Procedimiento:
Se mezcla 1 g de heces con agua destilada y se filtra para eliminar residuos gruesos.
Se centrifuga la suspensión a 1500 rpm durante 2-3 minutos.
Se descarta el sobrenadante y se resuspende el sedimento en la solución de sulfato de zinc.
Se centrifuga nuevamente y se deja reposar para que los parásitos floten.
Se toma una alícuota de la capa superficial y se coloca en un portaobjetos.
Se examina al microscopio en aumento 10x y 40x.
Ventajas
Buena recuperación de protozoarios y algunos helmintos ligeros.
Permite una visualización clara debido a la flotación diferencial.
Desventajas
Puede deformar ciertos quistes o lisar trofozoítos frágiles.
No es efectivo para huevos pesados de tremátodos y céstodos.
Ritchie
Consiste en:
Este método utiliza una centrifugación diferencial con formol y éter para separar y concentrar los parásitos en el sedimento de la muestra fecal. Es útil para recuperar huevos de helmintos, quistes de protozoarios y larvas.
Procedimiento:
Se mezcla 1 g de heces con formol al 10% y se filtra.
Se añade éter en una proporción de 1:1 con el formol.
Se centrifuga a 1500 rpm durante 3-5 minutos.
Se observan tres capas:
Superior: éter con restos de grasa.
Intermedia: solución de formol.
Inferior: sedimento con los parásitos.
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Mazzotti L. Diagnóstico de las parasitosis intestinales [Internet]. Academia Nacional de Medicina de México. 1956 [citado 16 de febrero de 2025]. Disponible en:
https://www.anmm.org.mx/bgmm/1864_2007/1956%20v86%20n4%20%5B247-254%5D.pdf
Comparación de tres métodos de concentración de enteroparásitos en muestras fecales humanas | Revista Cubana de Medicina Tropical. (n.d.).
https://revmedtropical.sld.cu/index.php/medtropical/article/view/494/386
Universidad Veracruzana. MANUAL DE PROCEDIMIENTOS PARA EL LABORATORIO DE LA E. E. PARASITOLOGIA CLINICA [Internet]. Facultad de Bioanálisis. [citado 16 de febrero de 2025]. Disponible en:
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César, G. F. J., Milena, G. C. A., César, G. F. J., & Milena, G. C. A. (n.d.). COMPARACIÓN DE SENSIBILIDAD Y ESPECIFICIDAD DE DOS TÉCNICAS DE DIAGNÓSTICO DIRECTO: KATO-KATZ-SAF Y RITCHIE-FRICK (FORMOL-GASOLINA) EN EXAMEN COPROPARASITOLÓGICO PARA LA IDENTIFICACIÓN DE ESTADIOS INFECTIVOS DE GEOHELMINTOS EN POBLACIÓN INFANTIL EN EDAD PREESCOLAR Y ESCOLAR.
http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0121-52562017000200022