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Introducción al laboratorio clínico - Coggle Diagram
Introducción al laboratorio clínico
Recomendaciones para la toma de muestras
Alistar el material para la toma de muestra
Alistar los elementos de protección personal
Correcto lavado de manos
Realizar la extracción correctamente
Preparar la muestra para ser transportada
No colocar mucho alcohol para evitar errores en la muestra
No realizar dos veces la extracción
Flebotomía
Sangre capilar
Se recomienda cuando
No se puede acceder a las venas recomendadas
Las venas están ocupadas
La punción es peligrosa para el paciente
La punción se lleva acabo en
Superficie medial del pulgar de pie
Superficie lateral del anular o medio
La superficie medial o lateral del pie
El lóbulo de la oreja
Procedimiento
1- Dar masaje para concentrar la sangre
2- Limpiar con alcohol
3- Con una mano sostener le dedo y con otra la lanceta
4- Rápidamente se hace la punción
5- se descarta la primera gota
6- Presionar el dedo
7- Sellar los tubos
Consideraciones
Se debe permitir que la concentración de sangre fluya, no presionar demasiado
Evitar los dedos quemados o dañados
Colección en neonatos
Se colecta en pie
Se realiza limpieza con gasa tibia
No hacer presión excesiva
Al terminar ejercer presión sobre la herida
Punción arterial
Es necesaria cuando
La muestra venosa no abarca los parámetros necesarios
Parámetros que se miden
Modo de ventilación
Zona de la punción
Frecuencia respiratoria
Temperatura del paciente
Fracción de oxigeno inspirado
Anticoagulantes
Heparina de sodio
Tipo de jeringa
Jeringas plásticas con anticoagulante
Jeringas BD preset
Procedimiento
Sitios de punción
Arteria humeral o braquial
Arteria femoral
Arteria radial
Es mas difícil hacer punción veosa
Es simple la observación posterior a la punción
Es una arteria fácilmente identificable
Punción capilar en la planta de pie
Maniobra de Allen
Demuestra el flujo de sangre
Complicaciones
Hematoma
Espasmo
Dolor
Infección
Trombosis
Hemocultivo
Se realiza para la detección de microorganismos en la sangre
Se realiza cuando hay sospecha de
Artritis, endocarditis, meningitis, neumonía, pielonefritis, osteomielitis, sepsis
Fiebre de origen desconocido
Infección abdominal
Recomendaciones
Informar al paciente sobre la técnica
Utilizar técnica antiséptica estricta
Tomar 2 o 3 muestras en picos febriles
Obtener cantidad suficiente de la muestra
Enviar los hemocultivos a laboratorio
Equipo
Torundas, torniquete, guantes estériles, clorhexidina venosa, agujas, frascos para hemocultivo
Toma de muestra a través de catéteres centrales
Utilizar la vía central proximal del catéter
Suspender las infusiones
Aspirar lentamente para evitar la hemolisis
Extracción de sangre vía infusión
Se debe quitar una cantidad adecuada de fluido contenido en el catéter
Procedimiento
Asegurarse que el flujo de infusión esta detenido
Realizar una asepsia rigurosa
Enjuagar la cánula con solución salina isotónica
Los primeros 5 ml se deben descartar
Conectar el adaptador de extracción por vacío o catéter
Retirar el adaptador
Reiniciar la infusión
Muestras de Heces
Técnicas de recolección
Método de Graham
Coproparasitoscopico seriado
Amiba en fresco
Transporte de la muestra
Hisopodado rectal
Recolección de la muestra
Frasco estéril
En coprología se analiza
Química
Bacteriológico
Macroscopica
Parasitológico
El análisis ayuda a descubrir
Ictericia obstructiva
Parasitos
Obstrucción gastrointestinal
Disentería
Colitis ulcerosa
Excreción de grasas alto
Sangrado
Se puede confirmar la presencia de
Virus
Parasitos
Bacterias
Recomendación antes de tomar la muestra
No consumir medicamentos
Decir si hubo ingesta de bario
No seguir dietas especiales
No estar en tratamiento de antibióticos
Leer las instrucciones
Recomendaciones para la recogida de heces
Preparar el inodoro para colocar una bolsa, donde caeran las heces
El laboratorio le proporcionara un recipiente que debera llenar hasta la marca
Es ideal recoger tres muestras
Material
Frasco no esteril
Medios de transporte (Card-Blaird)
Frasco esteril
Procedimiento
1- Obtención de muestra de heces
2- Almacenar la muestra
3- Recolectar la muestra en medio de transporte
Toma de muestras de orina
Generalmente se usa para observar el daño en tracto urinario
Fases del control de calidad
1- Fase preanalítica
Criterios de aceptación y rechazo de la muestra
Idoneidad de condiciones (paciente)
Ejercicio
Toma de medicamentos
Orina de 4 horas
Actividad sexual
Primera orina de la mañana
Otros
idoneidad de condiciones (muestra)
Condiciones del recipiente
Método de recolección
Micción espontanea
Cateterismo vesical
Pacientes sondados
Toma de muestra pediátrica
Punción suprapúbica de la vejiga
Ilegibilidad o rechazo
Condiciones previas del paciente
Métodos de recolección
Instrucciones para hombre
Antes de orinar, se limpia la cabeza del pene, iniciando por la zona uretral
Orinar primero en el inodoro, después recolectar 100 ml
Tapar el frasco y llevar al laboratorio lo antes posible
Lavarse las manos
Destapar el frasco de recolección
Instrucciones para mujer
Lavarse las manos
Destapar el frasco de la muestra
Sentarse lo mas atrás del inodoro posible y abrir los labios internos con los dedos
Limpiar bien la zona
Orinar primero en el inodoro y después recolectar 100 ml
Tapar el frasco y llevar al laboratorio
Muestra de secreción faríngea
Es una de las muestras mas solicitadas en niños, sin embargo la flora microbiana dificulta su interpretación
Indicaciones
Se realiza para el diagnóstico de faringoamigdalitis provocado por S. pyogenes
Microorganismos que se aíslan en la faringe
Estreptococos beta hemoliticos y alfa hemoliticos, B. catarhallis, Neisserias, estafilococos, diplococos, bacilos, etc.
Cuidados y recomendaciones
El paciente no debe hacer gárgaras con ninguna solución
Toma de muestra
La muestra debe ser tomada después de la aparición de los síntomas
Se tomara la muestra con isotopos, en la zona amígdala y faringe posterior así como de zonas inflamadas
El isopo se transportara en un medio Stuart
Técnica de recolección
Colocar al paciente bajo una buena fuente de luz
Con un abate lenguas presionar la lengua hacia abajo, hasta observar los pilares faringeos
Introducir hasta la nasofaringe, dos isopos sin causar trauma
Rotar el isopo de alginato de calcio durante 10 a 15 segundos
Retirar rápidamente
Aspirado nasofaringeo
Cuidados y recomendaciones
Tomar la muestra en ayunas
Técnica de recolección
Es recolectado mediante una sonda nelaton o con isopo esteril
Aspirar luego el material con una jeringa esteril
En virologia, se colocan en recipientes para virus
Expectoraciones
Esputo
El cultivo de esputo sirve para detectar infección en el tracto respiratorio inferior
Material
Frasco estéril de boca ancha y hermético
Suero fisiológico estéril
Técnica de obtención de la muestra
Enjugar la boca con agua destilada o solución salina
Indicar al paciente un lavado de dientes y lengua, únicamente con agua para remover la flora oral
Instruir al paciente para una obtención de esputo, a traves de un tocido
Observaciones
Es necesario tomar la muestra antes del tratamiento antibiótico
No es útil para anaerobios
No son inoculables las muestras de dudosa procedencia
Si no se obtiene una buena cantidad, es inútil esta técnica
Cultivo
Negativo
Valorar microorganismos atípicos
Positivo
Se valoraran, identificaran y valoraran
Microorganismos no pertenecientes a la microbiota normal
Microorganismos con un crecimiento rapido
Microorganismos pertenecientes a la microbiota natural
Esputo inducido
Cuidados y recomendaciones
Instruir al paciente para un cepillado con agua
Realizar una nebulización con agua destilada o solución salina
Lavado y cepillado broncoalveolar
Cuidados y recomendaciones
El paciente debe estar en ayunas
Los anestésicos locales pueden inhibir el crecimiento
Para el cultivo de hongos y micobacterias se realiza el mismo procedimiento
Técnica de recolección
A través de la técnica de fibrobroncoscopia
Colocar una trampa de Lukens en el fibrobroncoscopio
Irrigar con 10 cc de solución salina no bacteriostática
Técnica de recolección
Equipo de fibrobroncoscopia
Sistema de succión
Recipiente de boca ancha estéril
Lamina de vidrio
Aspirado traqueal
Técnica de recolección
Introducir la sonda por el tracto endotraqueal
Ocluya el orificio distal de la sonda y comience a succionar, retire la sonda lentamente
Retirar la oclusion para que se conserve la muestra
Colocar la muestra en un frasco esteril
Transporte
Se recomienda a los 15 minutos, no exceder las dos horas
Punción transtraqueal
Técnica de obtención del producto
Se realiza por personal entrenado
Desinfección de la piel con yodopovidona
Introducción del catéter por punción de la membrana cricotiroidea
Volumen de la muestra
La máxima cantidad de aspirado posible
Transporte y conservación
Colocar la muestra en medio de transporte para anaerobios
Envió inmediato al laboratorio
Exudado uretral y cervical
Exudado uretral
Indicaciones y valoración
La sintomatología es variable, incluyendo molestias inespecíficas, disuria o secreción purulenta
La toma debe realizarse sin haber orinado dos horas antes
No deben utilizarse torundas de algodón
Agentes etiológicos
Neisseria gonorrhoeae, Chlamydia trachomatis, Ureaplasma urealycum, Candida spp, Trichomonas vaginalis
Material necesario
Equipo para higiene externa, gasas esteriles,porta objetos, tubo esteril, Asa de siembra de platino, Medio de transporte Stuart, isopos uretrales finos
Técnica
Limpiar cuidadosamente la mucosa
Se le solicita al paciente que se contraiga el prepucio durante todo el procedimiento
Se recoge el exudado con un isopo o una asa bacteriológica
Si no hay secreción franca se hace un exprimido
En caso de no obtener secreción, introducir el isopo con una rotación
Deberán introducirse dos isopos
Transporte y conservación
El examen debe observarse de inmediato
En caso de no poder hacerlo inmediatamente, no se deben pasar las 3 hrs
Secreción uretral
Cultivo
Esperar las observaciones
Tinción de Gram
DCGN presentes
Tratamiento Gonococo
Si PMN
Tratamiento UNG
No PMN
Tratar según los resultados de cultivo
Piel y mucosas
La muestra de elección en el caso de infecciones de íel y partes blandas (mucosas)depende del carácter de la lesión y no de los microorganismos que se sospechen
Heridas superficiales y abscesos abiertos
Material
Suero fisiológico, jeringa y aguja estériles, recipientes estériles con tapa de rosca, Hisopos con medio de transporte Stuart
Técnica
Limpiar la herida del borde hacia afuera, con gasa impregnada de SSI estéril y alcohol
Lavar la parte interna de la herida con solución salina abundante
Recoger la pus con jeringa o aguja
Cuando la muestra sea insuficiente aplicar suero o solución de Ringer lactato y aspirar nuevamente
Volumen
Se necesitara obtener unos 10 ml de muestra
Transporte y conservación
El examen se debe hacer al instante
Si no hay medio de transporte se colocan los hisopos en tubos esteriles
Abscesos cerrados
Materiales
Gasas esteriles, alcohol etilico al 70 %, yodo povidona al 10 %, jeringa esteril y aguja IM
Tecnica
Herida cerrada con órgano cerca estéril; Lavar con jabón y soluciones antisépticas
Herida cerrada con órgano adyacente no estéril: Limpiar con solución salina normal
Transporte y conservación
Las muestras deben mandarse a laboratorio lo mas pronto posible
Mantener las muestras a temperatura ambiente
Herida quirúrgica
Se realizara por punción y se guardara la muestra en frasco estéril
Si se realiza con hisopo, lavar la zona y sumergir el hisopo en la pus
La muestra se tomara con técnica aséptica luego de un lavado para retirar la contaminación
Quemaduras
Los mejores resultados se dan por un corte de tejido de 3 a 4 mm
Se transporta en frascos con rosca estériles
Biopsia y tejidos
Material
Equipo para preparación de piel, frasco estéril para la muestra microbiológica, frasco limpio para la muestra patológica, solución salina no bacteriostática
Técnica
Seleccionar la muestra para enviar a patología y laboratorio clínica
Cuidados y recomendaciones
Realizar preparación antiséptica de la zona donde se tomara la biopsia
Conservara la esterilidad de la muestra hasta su recepción
Colocar la muestra en solución salina no bacteriostática
Aspirado de medula osea
Técnica
Aspirar directamente de la cresta iliaca
Cuidados y recomendaciones
Procedimiento realizado con anestesia local
Para busqueda de hongos se sigue la misma técnica
Preparación de la piel con técnica aséptica
Transporte
Se recomienda a los 15 minutos de la recolección a temperatura ambiente
Líquidos corporales
Los líquidos corporales contienen diversos constituyentes químicos y celulares que interactúan dinámicamente para mantener el equilibrio corporal
En laboratorio clínico se estudian
Cefalorraquídeo, amniótico, de cavidades cerosas, sinovial, seminal y de exudado gástrico
Tánica de recolección general
Realice preparación de la piel con técnica aseptica
Puncionar con aguja y jeringa estéril, recoger el mínimo de liquido repartido en los tubos necesarios
Recolectar en frasco aparte para análisis celular, recolectar en frasco con coagulante para citoquímico, recolectar en frasco estéril para cultivo de bacterias
Liquido cefalorraquídeo
Cuidados y recomendaciones
Si se hace punción lumbar, el paciente debe permanecer acostado por 6 horas
Si se requiere PCR obtener otro tubo de 1 ml
Los virus mas comúnmente buscados son los enterovirus
Liquido amniótico
Amnioscentesis
Se usa para retirar una pequeña cantidad de liquido amniótico que rodea al bebe en el útero
Indicaciones
El estudio de malformaciones o enfermedades genéticas
Cuando las pruebas de cribado san resultados anormales
Cuando alguna persona de la pareja tiene antecedentes genéticos
Para determinar si los pulmones del feto están maduros
Liquido de cavidades serosas
Pericardiocentesis
Es un procedimiento de emergencia que puede recobrar la función cardiaca y se realiza en casos de emergencia
Indicaciones
Confirmara presencia de derrame pericárdico
Instilar agentes terapéuticos
Insuflar aire para diagnostica imagenológico
Obtención de muestra de derrame pericárdico para estudios de laboratorio
Contraindicaciones
Evitar puncionar en sitios con punciones dermatológicas
Derrame pericárdico traumático
Rotura miocárdica
Disección aortica
Liquido sinovial
Permite el diagnostico de
Artropatías por cristales, diagnostico de artritis sépticas, ayuda a establecer el diagnostico de otras enfermedades reumaticas
El estudio completo incluye
Microscópico
Uso de tinciones
Macroscópico
Lugares de punción
Rodilla, hombro, cadera, codo, muñecas y tobillos
Liquido seminal
Aspirado gastrico
Ojo y oido
Ojo
Esta técnica sirve para la detección de conjuntivitis bacteriana que a menudo son unilaterales
Material
Hisopos con medio de transporte
Suero fisiológico estéril
Técnica
Debe obtenerse la muestra antes de la instalación de los analgésicos locales
Con un hisopo mojado con solución salina estéril, frotar sobre la conjuntiva dorsal inferior y el fórnix de afuera hacia dentro
Transporte y conservación
El transporte debe ser inmediato
Para chlamydia se utilizara un medio de transporte especifico
Raspado corneal
La lesiones traumáticas a nivel de cornea son relativamente frecuentes
Técnica
Poner 1 o 2 gotas de anestesico
Realizar el raspado de múltiples áreas de ulceración
El material obtenido se siembra en los medios
Transporte y conservación
Una vez colocados los portaobjetos no se requieren medidas para su conservación
Los medios se transportan de manera inmediata al laboratorio
Oido
Conducto auditivo externo
Esta indicado para la búsqueda de otitis externa
Material
Asas bacteriológicas descartables, portaobjetos, hisopos estériles, suero fisiológico estéril
Técnica
Se visualiza con otoscopio el conducto auditivo externo
Se obtiene la muestra con asa bacteriológica y un raspado fuerte
Se coloca la muestra en portaobjetos
Se obtiene una muestra con hisopos para el cultivo
Conducto auditivo interno
Timpanocentesis
Indicaciones
No solicite cultivo para anaerobios
Transporte la muestra rápidamente al laboratorio
No refrigere la muestra