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image Adaptación de la función de la raíz por plasticidad de la…

- - - - -Se retrasa tras la germinación por deficiencia en Fe, Mn y Zn
      - -Se mejora tras la germinación por deficiencia de K y S
      - Exceso de sal (sin afectar crecimiento de la planta) provoca un aumento de la suberización en Arabidopsis raíces
- - - - efectos inesperados sobre la acumulación de elementos no relacionados
        
        Un cambio en la polarización de la membrana
        
        Un gradiente de pH que puede alterar los procesos de transporte
  - - - Estructuras macroscópicas como el corcho
      - Suberización
        
        Resistencia en lugar de un bloqueo.
        
        Laminillas de suberina de una célula endodérmica no bloqueo cualitativo
        
        Variante del ensayo puede suprimir la derivación de la FDA a través de plasmodesmos.
    - - Plasticidad inesperada de la suberización endodérmica en la deficiencia de nutrientes y lniveles de la hormona del estrés
      - Capacidad de las raíces para aumentar y para disminuir la suberina preformada sirve para la adaptación de las raíces a diferentes ambientes del suelo
      - Estudiar el grado en que la variación de la suberización endodérmica existe dentro y entre especies e investigar si ha sido un objetivo para la selección natural
- - - - Puede presentarse ausencia o disminución de la señal Fy
      - Gran importancia dentro de las laminillas de suberina en células endodérmicas antiguas
        
        Se pudo observar disminución e incluso ausencia de estas laminillas en estas células
      - Reducción de la acumulación de suberina en partes de la raíz
      - Disminuye la biosíntesis de suberina
        
        Degrada también activamente las laminillas de suberina existentes
    - - Las vías de señalización de etileno y de ABA son antagonistas en el proceso de regulación de la suberina
    - - La disminución en la acumulación de suberina se observa en la deficiencia de Fe, Zn y Mn.
        
        Deficiencia de Fe
        
        Asociada a la producción de etileno y etileno ACC como precursor
  - - - Mediante cuantificación química
        
        Al aplicar ABA, se observo un aumento en el contenido de suberina en la raíz
      - ABA no solo mejora la suberización
        
        Altera también su progresión de desarrollo
        
        Lográndose una deposición ectópica en la raíz y corteza
      - Importante en la biosíntesis de suberina en las raíces vivas
        
        Además presento importancia en la expresión de GPAT5
        
        Inducido en células corticales
        
        Llegándose a extender hasta las células epidérmicas
    - - Considerándose a los efectos de esta señalización como respuestas locales y tempranas a hormonas de estrés
- - - - Barrera apoplástica visible de plántulas de 5 días incubadas en yoduro de propidio (15mM)
      - Inicio de elongación: célula endodérmica con sección óptica más ancha
      - Observación de la banda de Casparian autoflorescente.
      - Laminillas de suberina teñidas con amarillo flúor.
        
        Imágenes de patrones de suberina: continuas, parcheadas y no suberizadas.
        
        Unión hipocótilo-raíz de plántulas incubadas con ácido láctico (0.01% p/v) a 70°C y teñidas con azul de anilina.
      - Análisis de suberización con secciones de hipocótilo y sistema radicular teñido. Se observa la endodermis, corteza y patrones de suberina.
    - - Se fijaron las plantas en glutaraldehído, tampón fosfato, tetróxido de osmio y ferrocianuro de potasio. Se deshidrataron en acetona, se infiltraron en resina Spurr y se polimerizaron en un horno.
      - Se seccionó la unión hipocótilo-raíz para teñirlas con acetato de uranilo 4% y citrato de plomo en H2O.
      - Se tomaron micrografías con microscopio electrónico (con aceleración de 80kV y 20 000 aumentos).
  - - - Se amplificaron pares de bases y se recombinaron.
      - Las plantas se transformaron por inmersión florar.
    - - Deficiencia de azufre con medio Hoagland pH de 6.1 con glucosa y agarosa. Suplementado con K.
      - Deficiencia de potasio en medio MS (50 µM) complementado con KCl.
      - Suberina con 10 µM de Fe-EDTA para limitar el crecimiento de raíces.
      - Tratamiento con sales utilizando NaCl en medio MS. Plantas cultivadas en suelo y fertilizadas con Hoagland y Fe-HBED.
      - Definiciencia de metales en medio MS con pH 5.7 y 1% de sacarosa. Se complementó con 50 µM de Fe-EDTA, MnSO4 y ZnSO4.
      - Electrolitos
        
        Lausana 1 y 2: Plantas cultivadas en suelo 19-23°C con 100 µE de luz.
        
        Aberdeen 1: ´Plantas cultivadas en suelo a 22°C, 35% H y 100 µE de luz. Fertilizadas con Hoagland y Fe-HBED.
        
        Aberdeen 2: Plantas cultivadas en placas MGRL con sacarosa (1%) y agar tipo E (1.2%) a 19°C.
        
        Hokkaido 1 y 2: Plantas en cultivos hidropónicos en cámaras de crecimiento y lámparas fluorescentes con un 70% de H.