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TINCIONES Y CULTIVOS PARA EL ESTUDIO DE LOS PARASITOS - Coggle Diagram
TINCIONES Y CULTIVOS PARA EL ESTUDIO DE LOS PARASITOS
Las técnicas de iluminación de contraste de fases, campo oscuro, contraste diferencial de interferencia, luz polarizada y Jamin Lebedeff, demostraron que las estructuras fijadas y coloreadas eran similares a las que se
observaron en organismos vivos
ESTRATEGIAS PARA ANALIZAR LAS ESTRUCTURAS DE PROTOZOARIOS
La estructura compleja y delicada de los protozoarios obligó a utilizar métodos más complicados que los que se aplicaron en bacteriología, por lo que se recurrió a estrategias que eran comunes en histología: la fijación y la tinción
FIJADORES
Un excelente fijador es aquel que penetra con rapidez la estructura parasitaria, detiene su metabolismo y le provoca pocos o nulos cambios morfológicos
las soluciones fijadoras son:
formaldehído
Schaudinn
alcohol
polivinílico (pva)
Merthiolate-yodo-formaldehído (MIF)
Fenol-alcohol-formaldehído (PAF)
Alcohol-formaldehído-ácido acético
(AFA)
Procedimiento para fijar trematodos
Procedimiento para fijar cestodos
Procedimiento para fijar nematodos
Lactofenol de Amann
Líquido de Lent
Glicerina
Gelatina glicerada (glicerogel)
TINCIONES
La tinción de estructuras parasitarias puede ser efímera o permanente
Preparaciones efímeras
Las preparaciones efímeras son fáciles, rápidas y útiles para
observar, discriminar y diagnosticar estructuras parasitarias
-La solución de lugol
es de uso generalizado.
Preparaciones permanentes
Para observaciones exhaustivas es preferible hacer preparaciones permanentes con colorantes que permitan mayor contraste,
como Giemsa, hematoxilina férrica, negro de clorazol,
tricrómica de Gomori-Wheatley y Ziehl-Neelsen