Please enable JavaScript.
Coggle requires JavaScript to display documents.
Pruebas de Diagnóstico para Parasitosis - Coggle Diagram
Pruebas de Diagnóstico para Parasitosis
Harada-Mori
Proceso
Vertir de 3 a 5ml de solución salina en los tubos de 25x200mm
Colocar la muestra en el papel filtro con aplicador de madera
Colocar la solución en el papel con la muestra
Esperar para que las larvas se concentren
Incubar de 27°C a 37°C de 4 a 10 días
Aplicación
Conteo de larvar
Identificación morfológica
Obtener larvas rabditiformes y filariformes
Urcinarias
Estrogiloideos
Diferenciación de huevos
Diferenciación de larvas
Determinar viabilidad de huevos
Embrionar huevos para estudios
Seguimiento de tratamientos
Uso de anti-helmínticos
Fundamento
Cultivo de heces en papel filtro
Lar larvas se concentran en solución salina
Las huevos de nematodos pueden tener su desarrollo hasta estadios larvales
Permite identificación morfológica
Requiere
Solución salina
Muestra fresca de Heces
Aplicador de madera
Papel Filtro
Tubos
Limitantes
Lar larvas recobradas pueden ser infectantes
Strout
Proceso
Obtener 5ml de sangre por punción venosa
Dejar coagular la sangre a temperatura ambiente
Retraer el coágulo
Sacar el coágulo y centrifugar 3 minutos a 500rpm
Eliminar sobrenadante y centrifugar sedimento
Decantar y examinar el botón
Aplicación
Diagnóstico
Enfermedad de Chagas
Identificación
Trypanosoma cruzi en sangre
Identificación durante periodo agudo
Útil en las primeras 6 semanas de la infección
Fundamento
Concentración de hemoflagelados
Examinación de sedimento en busca de trypomastigotes móviles
Limitantes
Debe realizarse en menos de 4 horas
Requiere de sangre sin coagular
Puede no identificar infecciones cronicas o fluctuantes
Requiere procesar mayores volúmenes de sangre
No es 100% efectivo para detectar fase aguda
Peligro biológico, los tripomastigotes son altamente infectantes
Requiere
Muestra de sangre
Graham
Proceso
Instruir al paciente de llegar sin bañarse ni defecar
Colocar cinta adhesiva en el abatelenguas
Colocar al paciente en posición genuopectoral
Hacer presión en región perianal de arriba-abajo y derecha-izquierda
Separar cinta y observar
Aplicación
Diagnóstico parasitosis
Taenia
Ascaris Lumbricoides
Enterobius Vermicularis
Método de elección
T.Trichiura
H.nana
Diferenciación de huevos
Diferenciación de larvas
Determinar viabilidad de huevos
Embrionar huevos para estudios
Seguimiento de tratamientos
Uso de anti-helmínticos
Fundamento
Buscar huevos de Enterobius
Método del raspado perianal
Realizar diferenciación específica a partir de la morfología de los huevos
Limitantes
Requiere por lo menos 3 muestras para garantizar diagnostico
Debe realizarse en 4-6 horas
Los huevos pueden inefectivarse
Requiere
Cinta adhesiva transparente
Portaobjetos
Paciente sin aseo y sin defecar
Abatelenguas
Baermann
Proceso
Conectar el embudo a una manguera de caucho
Cerrarla con pinza de Mohr
Colocar agua a 40-45°C en el embudo
Colocar la muestra sobre la gasa
Recolectar, centrifugar e identificar
Aplicación
Conteo de larvar
Recuperar larvas de uncinaria del suelo
Relizar concentración larvar
Necator Americanus
Ancylostoma
Strongyloides Stercoralis
Identificar larvas por morfología
Fundamento
Concentración de larvas por termo e higrotropismo
Provocando su concentración en el agua
Limitantes
La muestra debe ser fresca y no refrigerarse
Por inmovilización de larvas
No permite identificar larvas no móviles
Impide migración al agua
Requiere exámenes repetidos
Para garantizar el diagnóstico
Requiere
Soporte Universal
Embudo
Tela de alambre
Gasa