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PRINCIPAIS MÉTODOS E TÉCNICAS PARA O EXAME PARASITOLÓGICO, MM DP - Coggle…
PRINCIPAIS MÉTODOS E TÉCNICAS PARA O EXAME PARASITOLÓGICO
SANGUE
LOCAL DA COLETA :
POLPA DIGITAL DO ANELAR ESQUERDO
LÓBULO DA ORELHA
PELE FINA E BOA IRRIGAÇÃO
CARACTERÍSTICAS
PARTE DO CICLO DE VIDA DO PARASITO OCORRE NO SANGUE
GERALMENTE SÃO DOENÇAS TRANSMITIDAS POR VETORES
DETECÇÃO DE FORMAS INFECTANTES DO PARASITO
CUIDADOS NA COLETA DA AMOSTRA
USO DE EPI
ASSEPSIA DO LOCAL
HIGIENIZAÇÃO DAS MÃOS
LOCAL SECO
IMPORTÂNCIA
EXECUÇÃO IMEDIATA APÓS A COLETA DE SANGUE
EXAMINAR AO MICROSCÓPIO UMA GOTA DE SANGUE
EVITA EXAMES MAIS INVASIVOS
VISUALIZAÇÃO DO PARASITA FIXADO E CORADO
BAIXO CUSTO E FÁCIL EXECUÇÃO
MÉTODOS DE CONCENTRAÇÃO DO SANGUE
PESQUISAS DE HEMOPARASITAS
ESFREGAÇO ESPESSO - FOLHA
TAXA BAIXA DO PARASITA
AMPLIAM A SENSIBILIDADE DO EXAME
AMENTAM O NÚMERO DE ORGANISMOS RECUPERADOS
ESFREGASSOS ESPESSOS
30 SEGUNDOS
SECAR À TEMPERATURA AMBIENTE
MOVIMENTOS CIRCULARES DO CENTRO PARA PERIFERIA
MERGULHAR A PREPARAÇÃO EM ÁGUA CORRENTE OU SOLUÇÃO SALINA A 0,85%
HEMÓLISE
REUNIR AS GOTAS
SECAR À TEMPERATURA AMBIENTE
3-4 GOTAS DE SANGUE NA LÂMINA
COLORAÇÃO DOS ESFREGAÇOS SANGUÍNEOS
WRIGHT
CORAM COMPONENTES NUCLEARES E CITOPLASMÁTICOS DOS LEUCÓCITOS
TONS VERMELHOS - ÁCIDOS
AZULADOS - BÁSICOS
LEISHMAN
GIEMA
FIELD
EXAME DIRETO
GOTAS DE SANGUE + LAMÍNULA
2 GOTAS DE SALINA - RETARDA GOAGULAÇÃO
OBSERVAÇÃO A FRESCO
VISUALIZAR OS PARASITOS VIVOS
TÉCNICA DE ESFREGAÇO SANGUÍNEO
ESPALHAR A GOTA ENTRE AS DUAS LÂMINAS
UMA GOTA DE SANGUE NA LÂMINA + LAMÍNULA
COLETA DA AMOSTRA
OBSERVAÇÃO DO ESFREGAÇO NO MICROSCÓPIO
ESFREGAÇO EM CAMADA DELGADA + GOTA ESPESSA
FEZES
COLETA E CONSERVAÇÃO DE AMOSTRAS FECAIS
ORIENTAR O PACIENTE
COLETA
ACONDICIONAMENTO
TEMPO DE ENTREGA SEM CONSERVANTES (2 DIAS)
É FUNDAMENTAL PARA A QUALIDADE DO EXAME
COLETA DE AMOSTRA MÚLTIPLAS
3 AMOSTRAS EM DIAS ALTERNADOS
FRASCOS COM CONSERVANTES
CARACTERÍSTICAS
DETECÇÃO DE PARASITAS INTESTINAIS PELA PESQUISA DE DIFERENTES FORMAS ELIMINADAS NAS FEZES
MÉTODOS DE CONCENTRAÇÃO
SEDIMENTAÇÃO ESPONTÂNEA (HPJ)
OVOS E LARVAS DE HELMINTOS E CISTOS DE PROTOZOÁRIOS
SEDIMENTAÇÃO POR CENTRIFUGAÇÃO (MIFC)
OVOS E LARVAS DE HELMINTOS E CISTOS DE PROTOZOÁRIOS
FLUTUAÇÃO ESPONTÂNEA
(MÉTODO DE WILLIS)
CISTOS E ALGUNS OVOS LEVES (ANCILOSTOMÍDEOS)
CENTRIFUGO - FLUTUAÇÃO (MÉTODO DE FAUST)
CISTOS DE PROTOZOÁRIOS E ALGUNS OVOS LEVES
CONCENTRAÇÃO DE LARVAS POR MIGRAÇÃO ATIVA
HIDROTROPISMO E TERMOTROPISMO (POSITIVO DAS LARVAS)
MÉTODO DE BAERMANN-MORAES E RUGAI
LARVAS DE STRONGYLOIDES STERCORALIS
CONCENTRAÇÃO DE OVOS ATRAVÉS DE FILTRAÇÃO DAS FEZES EM TELA METÁLICA OU NÁILON (MÉTODO DE KATO - KATZ)
OVOS DE ALGUNS HELMINTOS
EXAME MACROSCÓPICO
CONSISTÊNCIA DAS FEZES
ELEMENTOS ANORMAIS
SANGUE E MUCO
PRESENÇA DE VERMES ADULTOS OU PARTES DELES
ODOR
EXAME MICROSCÓPICO
DETECÇÃO DE OVOS OU LARVAS DE HELMINTOS
CISTOS, TROFOZOÍTOS OU OOCISTOS DE PROTOZOÁRIOS
FORMAS PARASITÁRIAS
EXAME DIRETO A FRESCO
PREPARO
COLOCAR 2 A 3 GOTAS DE SALINA A 0,85%
COLOCAR PORÇÕES DE FEZES NA LÂMINA
FAZER UM ESFREGAÇO
OBSERVAR NO MICROSCÓPIO (10X OU 40X)
CORAR COM LUGOL (LARVAS DE HELMINTOS E CISTOS DE PROTOZOÁRIOS)
BAIXA SENSIBILIDADE
NÃO USA PROCESSO DE CONCENTRAÇÃO
EXCESSO DE DETRITOS
QUANTIDADE DE FEZES É PEQUENA
AVALIAR 3 LÂMINAS DE CADA AMOSTRA
ESCOLHA DO MÉTODO
SUSPEITA CLÍNICA
DE ACORDO COM A CARACTERÍSTICA DO PARASITA
MM DP
GRUPO
VICTOR HUGO RIBEIRO
LAÍS CASTRO
FABIANA OLIVEIRA