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EXAME PARASITOLÓGICO, Taynara Perim Lorena Pires Beatriz Laender - Coggle…

- - - - Execução imediata após a colheita
      - Locais mais usados para a coleta
        
        Polpa digital do anular esquerdo
        
        Lóbulo da orelha
        
        Locais de pele fina e com boa irrigação sanguínea
      - Resultado negativo
        
        Repetir a coleta no intervalo de 6 a 12 horas
      - Métodos dos profissionais da saúde na realização da coleta
        
        Assepsia do local (álcool iodado ou álcool 70%)
        
        Higienização das mãos
        
        Uso de EPI
      - Manejo correto para a coleta
        
        Ao se fazer a picada, o dedo ou o lóbulo da orelha devem estar bem secos
        
        Caso estejam molhados pelo antisséptico ou pelo suor, haverá hemólise das hemácias
  - - - Gota espessa
        
        Maior concentração dos parasitos
        
        Melhor identificação das espécies
        
        Isolamento e concentração de tripanossomos, leishmanias e microfilárias
        
        Aumentam o número de organismos recuperados nas amostras
        sanguíneas
        
        Identificação para a
        pesquisa de hemoparasitos
        
        Organismos suspeitos não são identificados nos esfregaços espessos
        
        Taxa do parasitismo, sendo muito baixa, dificulta a identificação das espécies
      - Esfregaço
        
        Utilização de corantes
        
        Field
        
        Giemsa
        
        Leishman
        
        Wright
        
        Métodos de coloração
        
        Mistura de corantes que em condições apropriadas, coram os componentes nucleares e citoplasmáticos dos leucócitos, com predominância de tons vermelhos (quando ácidos) e azulados diversos (quando básicos)
  - - - Métodos de realização
        
        Caso queira retardar a coagulação é adicionado 2 gotas de salina
        
        Gotas de sangue aplicadas sobre lamínula
- - - - Flutuação espontânea
        Método de Willis - pesquisa de ovos leves (ancilostomídeos)
      - Centrifugo-flutuação Método de Faust - cistos de protozoários e alguns ovos leves
      - Sedimentação por centrifugação Método de MIFC - ovos e larvas de helmintos e cistos de protozoários
      - Concentração de larvas por migração ativa. Hidrotropismo e termotropismo positivo das larvas
        Método de Baermann-Moraes e Rugai Larvas de Strongyloides stercoralis
      - Sedimentação espontânea Hoffman, Pons e Janer (HPJ) - ovos e larvas de helmintos e cistos de protozoários
      - Exame microscópico pode requerer diversas técnicas de concentração, dependendo da consistência da amostra, dos sintomas clínicos, das queixas dos pacientes:
      - É mais utilizado quando o número de formas parasitárias nas fezes é pequeno
    - - Permite visualizar a motilidade de trofozoítos dos protozoários em fezes recém emitidas. Para a identificação de cistos de protozoários e larvas de helmintos, a preparação deve ser corada com lugol.
      - Colocar 2 a 3 gotas de salina a 0,85% em uma lâmina, fazer um esfregaço na lamina com as fezes e observar no microscópio
      - É um teste rápido
      - identificação pode ser prejudicado quando o número de formas parasitárias nas fezes é pequeno.
  - - - Amostras múltiplas:
      - Coletar 3 amostras em dias alternados
      - Frasco com conservante