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Diagnóstico microscópico de hemoparásitos, Limpiar las láminas, Se examina…
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- Depositar gota de sangre y realizar gota gruesa
- Escribir reporte en el formato correspondiente
Se utiliza una lámina cóncava y se prepara la solución de coloración: Romanowsky Romanowsky modificado, Field, Giemsa y de Wright. Estos tienen colorantes ácidos(eosina) y básicos (azul de metileno, azul I y azul II) que colorean los componentes celulares acidofílicos y basofílicos.
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Se utiliza azul de metileno fosfatado para deshemoglobinizar la lámina se introduce en una solución de azul de metileno por unos segundos. Luego se saca y se lava utilizando una solución buffer, NO agua, cuidando que la muestra no se desprenda ya que esta, a diferencia del extendido, no se fija.
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Se deposita la gota de sangre sin tocar la incisión, para no promover la coagulación. Por cada paciente se recomienda utilizar 2 láminas, cada una con dos gotas gruesas, y una lámina de extendido.
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Se limpia la lámina con agua y jabón, y se desengrasa después con alcohol.
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Se examina la muestra en un microscopio con cuidado de no ir a confundir artefactos o plaquetas sanguíneas con parásitos de malaria, ya que esto podría llevar a un diagnóstico equivocado
Para que el examen sea considerado negativo es necesario que hayan sido leídos al menos 200 campos microscópicos.
Ante un examen negativo con un caso probable de malaria se recomienda repetir el examen dentro de las siguientes 24 horas, en especial si se trata de Plasmodium Falciparum